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三、实验所需主要仪器设备及台（套）数 控温式电热套（800W，500mL），24台；台秤（100g/0.1g），8台；电子天平（2200g/0.01g），2台；电子分析天平（150g/0.01mg），2台；低速离心机（10mL），8台；循环水式真空泵，4台；玻璃仪器干燥器，2台；电热鼓风干燥箱，2台；超纯水机组，1套；大冷藏室冰箱，1台。 四、实验成绩评定方法 （1）考核方式：实行平时实验操作与实验报告相结合的方式进行，实验总成绩为各次实验综合成绩的加权平均值，以百分制计分。 （2）实验综合成绩的评定方法：采用质性综合评价方式，即:实验操作过程50%，其中考勤10%、实验操作技术10%、实验结果10%、实验室规则（安全）10%、实验室卫生（三废处理）10%，以实验过程记录为参考；实验报告50%，其中实验预习10%、实验步骤10%、实验结果及现象记录10%、数据分析处理或现象解释20%。 （3）实验综合成绩占该课程期末总成绩的20%。 五、参考资料 1．实验教科书： 无机及分析化学实验，南京大学《无机及分析化学实验》编写组，高等教育出版社，2006. 2．实验参考书 (1)大连理工大学无机化学教研室编《无机化学实验》（2版），高等教育出版社，2004.6 (2)孙毓庆主编，《分析化学实验》，科学出版社，2004.9 (3)无机化学实验（第三版），北京师范大学无机化学教研室等编，高等教育出版社，2001.
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项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验 类型 | 开出 要求 |
1 | 有机化学实验一般知识 | 课堂讲授；试验室一般知识、（课程的性质、任务、要求、考试方法等）洗涤仪器、组装蒸馏、回流装置 | 3 | 50 | 2 | 验证型 | 必做 |
2 | 有机物元素的定性分析 | 实验室钠熔法分析样品中N、S、X、等元素 | 3 | 50 | 2 | 验证型 | 必做 |
3 | 重结晶提纯 | 用重结晶法精制乙酰苯胺；热水漏斗的使用 | 3 | 50 | 2 | 验证型 | 必做 |
4 | 茶叶中咖啡因的提取 | 1、用索氏提取器提取咖啡因2、升华法提纯咖啡因. | 4 | 50 | 2 | 验证型 | 必做 |
5 | 二苄叉丙酮的制备 | 利用反应物的投料比控制反应产物 | 3 | 50 | 2 | 验证型 | 必做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
序号 | 实验项目名称 | 主要仪器设备 | 主要材料 | 备注 |
1 | 有机化学实验一般知识 | 烧瓶、蒸馏头、冷凝管、接收器等下同 |
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2 | 有机物元素的定性分析 | 烧杯试管等 | 金属钠、硝酸银、硫酸亚铁等 |
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3 | 重结晶提纯 | 减压泵，热水漏斗 | 乙酰苯胺 |
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4 | 茶叶中咖啡因的提取 | 索氏提取器、蒸馏装置、蒸发皿、漏斗等 | 95%乙醇、氧化钙 |
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5 | 二苄叉丙酮的制备 | 烧杯、烧瓶、抽滤装置 | 苯甲醛、丙酮、乙醇、10%氢氧化钠、醋酸 |
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注：其它实验主要仪器为有机实验常用仪器：各种规格烧杯、标准口烧瓶，直、 球型冷凝管，蒸馏头，多规格锥瓶、分液漏斗，弯接管，弯管塞，干燥管，空 心塞，接头，接引管等。 | ||||
四、实验成绩评定方法
实验考核方式采用考勤、实验报告和平时表现分相结合的方式进行，平时成绩占30%，实验报告占40%，考勤占30%。最终实验成绩以总分20分计入《有机化学》课程期末考试总成绩。
五、参考资料
实验教材：曾昭琼主编《有机化学实验》；高等教育出版社，第三版。
参考教材：黄涛主编《有机化学实验》：高等教育出版社，第二版
周科衍吕俊民主编，《有机化学实验》高等教育出版社，
第三版
课程代码：x1201007 课程性质：学科基础课
课程名称：生物化学实验英文名称：biochemistric experiment
适用专业：生物科学、生物技术开设学期：第3学期
实验学时/总学时：32/32实验学分/总学分： 2/2
大纲拟定人：杨红花、林科大纲审定人：杨广成、林科
审定日期：2012-8-20
一、课程实验内容简介
《生物化学实验》是生物科学、生物技术本科专业的学科基础课，为独立设课。本课程的主要的任务是通过本课程的学习使学生掌握和熟练应用生物大分子结构和功能的基本理论、基本技术和方法，了解生物化学实验技术的应用及发展前景。通过本课程的学习使学生理解“生物大分子的分离和纯化方法，糖、蛋白质、核酸及主要次生代谢产物的定性、定量和有关生物化学性质的分析技术等”知识和技能，在学习生物化学理论的同时，加强实验操作能力以及实验数据处理能力。鼓励学有余力的学生自行设计实验或参与实验教改,将利用多媒体教学手段讲解实验的基本原理、方法及有关仪器的使用方法。
二、实验项目
项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验 属性 | 开出 要求 |
1 | 考马斯亮蓝法测定蛋白质的含量 | 标准曲线的配置及制作技术，利用分光光度计测定考马斯亮蓝G250结合待测蛋白质在595nm的OD值，通过标准曲线查得该蛋白质的含量。 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
2 | 紫外吸收法测定蛋白质含量 | 标准曲线的制作，利用紫外分光光度计检测蛋白质含量的技术 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
3 | 小麦萌发前后淀粉酶活性的比较 | 1、分光光度计检测酶活力的技术 2、标准曲线的制作方法 3、酶提取液的制备及反应 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
4 | 酶的特异性 | 酶作用底物的特异性检测技术 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
5 | 植物基因组DNA的提取 | 1、CTAB法提取植物基因组DNA的主要技术流程 2、有机溶剂沉淀DNA的操作 | 5 | 15 | 2 | 综合型 | 必做 |
6 | 植物组织中可溶性糖含量的测定 | 标准曲线的制作，利用分光光度计检测可溶性糖含量的技术 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
7 | 琼脂糖凝胶电泳检测DNA | 水平电泳检测DNA的操作 | 3 | 15 | 2 | 综合型 | 必做 |
8 | 酵母RNA的分离及组分鉴定 | 1、RNA的稀碱法分离技术 2、RNA水解产物的苔黑酚检测技术 | 4 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
9 | 聚合酶链式反应 | 聚合酶链式各组分的混样技术 PCR程序设定的操作步骤 琼脂糖电泳检测扩增产物的方法 | 5 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
10 | 植物组织中β胡萝卜素的提取 | 自行利用不同植物材料，采用合理的提取方法获得β胡萝卜素的技术流程 | 5 | 15 | 2 | 设计型 | 选做 |
11 | 乙酸纤维素薄膜电泳分离血清蛋白 | 乙酸纤维素薄膜的制备 常规的电泳技术 染色技术 | 3 | 15 | 2 | 综合型 | 选做 |
12 | 核酸的定量测定-紫外分光光度法 | 分光光度计的使用 紫外吸收法的测定原理和步骤 | 3 | 15 | 2 | 综合型 | 选做 |
13 | 乳酸脱氢酶同工酶的琼脂糖凝胶电泳 | 凝胶电泳的制备 电泳检测方法的步骤和鉴定 | 3 | 15 | 2 | 综合型 | 选做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
紫外可见分光光度计(2)、高速离心机(2)、高速冷冻离心机(2)、冰箱(2)、超低温冰箱(1)、超净工作台(1)、电子天平(2)、恒温摇床(1)、紫外分析仪(1)、PCR仪(2)、电泳仪(2)、恒温水浴锅(2)、微波炉(1)、光照培养箱(2)、微量取液器(15)、玻璃气流烘干器(1)
四、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册，以占课程总成绩的30%的比例纳入课程总成绩。
2．本课程将以现场实验操作考核为考核方式，其实验才做考核成绩以占课程总成绩70%的比例纳入课程的总成绩。
五、参考资料
使用教材：《生物化学实验教程》，刘箭主编，第一版，科学出版社，2004年.
参考教材：《分子生物学实验》，魏群主编，第一版，高等教育出版社，1999.
课程代码：t1206001 课程性质：专业主干课
课程名称：植物生物学英文名称：Plant Biology
适用专业：生物科学、生物技术开设学期：第1学期
实验学时/总学时：32/96 实验学分/总学分：2/6
大纲拟定人：赵法茂大纲审定人：杨广成、林科
审定日期：2012-8-30
一、课程实验内容简介
植物生物学实验是植物生物学课程的重要组成部分，它与植物生物学理论课的内容互为补充，密切联系，是学习植物生物学实验基本理论、基本知识，学习植物形态解剖学、植物分类学和植物生理学的基本方法与基本技能、培养学生动手能力和科学素质的一门理论联系实际的实践课。
二、实验项目
序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验属性 | 开出 要求 |
1 | 校园植物种类调查研究 | 学习、了解、基本鉴定校园和植物园常见植物。 | 4 | 25 | 2 | 综合型 | 必做 |
2 | 植物腊叶标本的采集与制作 | 以小组为单位，每组采集3种植物实验材料（最好是不同的类群），对它们进行鉴定后，再按一定的方法制成标本并保存起来。 | 4 | 25 | 2 | 设计型 | 必做 |
3 | 植物学实验的基本技能 | 学习显微镜的使用方法，临时装片制片方法和徒手切片法、离析法，掌握生物绘图方法。 | 4 | 25 | 2 | 验证型 | 必做 |
4 | 植物细胞与植物组织 | 植物细胞的基本结构； 植物细胞的质体和后含物的观察 保护组织——（1）双子叶植物的表皮； 单子叶植物的表皮； 机械组织——（1）厚角组织（2）厚壁组织 输导组织 分泌结构 | 4 | 25 | 2 | 验证型 | 必做 |
5 | 常见观赏植物器官颜色的观察分析 | 取不同颜色的叶（如绿色的叶、紫色的叶和秋季变成红色或黄色的叶等）、不同颜色的花瓣（如月季和早金莲等）以及不同颜色的果实（如西瓜果肉、草莓果肉和菠萝果肉等），制作临时装片，观察不同植物材料的器官颜色和细胞结构。 | 3 | 25 | 2 | 验证型 | 必做 |
6 | 营养器官的形态与结构 | 观察双子叶植物和单子叶植物根、茎、叶的初生和次生结构永久封片等 | 4 | 25 | 2 | 验证型 | 必做 |
7 | 花、果实、种子形态结构和类型 | 观察或解剖花、果实、种子的新鲜材料或永久封片 | 3 | 25 | 2 | 验证型 | 必做 |
8 | 植物组织水势的测定-折射仪法 | 阿贝折射仪法，测定植物组织的水势 | 3 | 25 | 2 | 验证型 | 必做 |
9 | 种子活力快速测定（TTC和红墨水染色法） | TTC法和红墨水染色法，测定种子活力 | 3 | 25 | 2 | 验证型 | 必做 |
四、实验所需主要仪器设备及台（套）数
投影仪（1台）、电脑（1台）、双目显微镜（25台）、电热恒温水浴锅（2台）、电子天平（2台）、数码相机（1台）、标本夹（25套）、标本采集工具（25套）、解剖镜（25台）、PH计（2台）、被子植物各营养器官永久切片（25套）、被子植物各生殖器官永久切片（25套）、各类群代表植物永久切片（25套）、阿贝折射仪（2台）、电子天平（2台）、分光光度计（2台）、离心机（2台）。
五、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2.将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
六、参考资料
1．教材：
《植物生物学实验指导》王英典，刘宁主编，高等教育出版社，2001
2．参考书：
《植物学实验实习指导》贺学礼主编，高等教育出版社，2004
《植物生物学实验教程》汪矛主编，科学出版社， 2003
《植物学实验》何凤仙主编，高教出版社出版，2000
《植物学野外实习手册》华东师范大学编，上海教育出版社出版，1993
《种子植物属种检索表》上、下册华东师范大学等编，人民教育出版社出版，1980
《植物制片技术》李正理编著，科学出版社，1978
《中国高等植物图鉴》中国科学院植物研究所编，科学出版社，1972-1981
《植物生理学实验指导》（第3版），张志良编，高教出版社，2003
《植物生理生化实验原理和技术》李合生主编，高教出版社，北京：2000
《现代植物生理学实验指南》汤章诚主编，科学出版社，北京：1999
课程代码：z1206002 课程性质：专业主干课
课程名称：动物生物学英文名称：Zoobiology
适用专业：生物科学、生物技术开设学期：第2学期
实验学时/总学时：32/96 实验学分/总学分：2/6
大纲拟定人：林贞贤大纲审定人：杨广成、于伟丽
审定日期：2012-8-30
一、课程实验内容简介
1、实验目的：本课程从加强基础、培养能力、提高素质的教学目标出发，建立一个与理论课有机联系，又具有相对独立性的科学、合理的动物生物学实验教学课程体系。在教学内容上，精选重组验证性实验，增加综合性实验及知识范围，加大操作难度适宜的自选实验的比例，引导、指导学生初步设计实验。
使学生通过本课程实验教学，不只是加深理解和巩固所学理论知识，而且更能切实掌握动物生物学基本实验技能，正确使用常规仪器，学会正确记录，分析讨论实验结果。
初步运用已学理论知识和实验技术方法设计并完成简单实验
培养学生独立实验能力、自主获取知识的能力，激发学生的求知欲望，启迪学生的创新意识
同时加强对学生科学求实态度，相互协作团队精神的培养，良好的实验室工作习惯的训练。
2、学生应掌握的实验技术：
通过本实验课程，使学生熟悉动物生物学实验的基本实验方法和技术，掌握动物组织临时装片制备方法，动物分类检索方法，生物绘图法，某些动物的活体实验方法，记录，分析讨论实验结果等方法重点掌握普通光学显微镜的使用，动物形态观察方法，各类实验动物内部解剖方法，各类脊椎动物的抓取、安死术、固定方法、外形测量方法和活体采血方法，比较解剖实验方法
3、实验方式：实验采用老师先演示示教，学生自己解剖操作的方式。
二、实验项目
项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验 属性 | 开出 要求 |
1 | 实动物组织制片与观察 | 1.组织制片：蛙血液涂片、蝗虫肌肉装片 2.动物组织玻片标本的观察 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
2 | 原生动物综合实验 | 1.草履虫形态结构与运动 2.草履虫的应激性实验：刺丝泡的发射和酸刺激的反应 3.草履虫对水平衡的调节 4.草履虫生殖装片的观察 5.其它原生动物活体示教 | 3 | 20 | 2 | 综合型 | 选做 |
3 | 河蚌的系列实验 | 1.河蚌的活体观察 2.河蚌的外形及内部解剖 3.心脏搏动与水温的关系 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
4 | 蛔虫和环毛蚓的比较 | 1.蛔虫的外形观察、内部解剖 2. 环毛蚓的外形观察、内部解剖 3. 蛔虫和环毛蚓的比较 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
5 | 螯虾和棉蝗的比较 | 1.螯虾的外形观察、内部解剖 2.棉蝗的外形观察、内部解剖 3.螯虾和棉蝗的比较 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
6 | 鱼的系列实验 | 1.鱼的外形观察与测量 2.活体采血 3.硬骨鱼的比较解剖 4.年轮的观察并鉴定年龄 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
7 | 蛙的系列实验 | 1.必做实验： （1）蛙的外形观察与测量 （2）内部解剖 2.选做实验： （1）微循环的观察 （2）坐骨神经 （3）心博起源的分析 | 6 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
8 | 家鸽的外形和内部解剖 | 1.鸟的外形观察与测量 2.活体采血 3.内部解剖 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
9 | 家兔的外形和内部解剖 | 1.必做实验：(1)兔的外形观察 (2)活体采血（耳缘血管、心脏） (3)内部解剖 2.选做实验： (1)家兔呼吸运动的调节 (2)家兔颈动脉插管术 | 6 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
10 | 血压测定及心电的描记 | 1.间接法测量人体血压 2.心电图的记录和心电图波的测量 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
11 |
| 1.无脊椎动物标本的观察 2.脊椎动物标本的观察 3.动物分类检索方法 | 3 | 20 | 2 | 综合型 | 选做 |
12 | XX湖浮游动物群落结构调查 | 1. 浮游生物网的使用和浮游动物采集 2. 浮游动物鉴定 | 3 | 20 | 2 | 综合型 | 选做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
显微镜20套、体视显微镜10套、解剖器具50套、显微成像系统1套、血压计10套、心电图机2套、生物信号采集系统6套、张力换能器6套、压力换能器6套、浮游生物网1套。
四、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2.将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
五、参考资料
1.黄诗笺，主编.《动物生物学实验指导》（第二版），高等教育出版社，2005
2.郑光美主编，普通动物学实验指导（第二版），高等教育出版社 1999
课程代码：z1203007 课程性质：专业主干课
课程名称：微生物学英文名称：Microbiology
适用专业：生物科学、生物技术开设学期：第3学期
实验学时/总学时：24/64 实验学分/总学分：1.5/4
大纲拟定人：高洁大纲审定人：杨广成、高洁
审定日期：2012-8-25
一、课程实验内容简介
1.实验目的：
微生物学课程实验是微生物课堂教学中重要的组成部分。通过本实验课程的教学，使学生较熟练的掌握微生物学实验的基本操作技术和初步掌握研究微生物的基本方法。通过对具体微生物材料的观察、分析，进一步加深和巩固对微生物学理论课所学知识的理解并提高学生分析和解决实际问题的能力。
2.实验方式：
要求学生熟练掌握显微镜的使用技术并熟悉显微镜的构造及保养方法；学会干热灭菌箱、高压蒸汽灭菌锅、恒温培养箱的使用；具有选择和制备培养基的能力；掌握基本染色原理和方法以及制片技术；熟悉细菌、酵母菌、霉菌的基本形态结构、生理生化特征和血清学特性，具有菌种初步鉴定的基本技能；通过实验，使学生学会无菌操作方法，掌握微生物的分离、筛选和育种的基本知识和技能。
二、实验项目
项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验 属性 | 开出 要求 |
1 | 无菌操作和微生物接种技术 | 1. 无菌操作的技术方法 2. 微生物接种技术 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
2 | 细菌的简单染色和革兰氏染色 | 1. 细菌简单染色的步骤和方法 2. 革兰氏染色的步骤和方法 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
3 | 放线菌、酵母菌、霉菌形态观察 | 1.识别各种细菌、放线菌、酵母菌及霉菌的菌落特征 2.学会放线菌、酵母菌、霉菌的一般培养和观察方法 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
4 | 微生物的大小与数量测定 | 1. 目镜测微尺和镜台测微尺的构造和使用原理，血球计数板的计数原理和计数方法 2. 用显微镜直接测定微生物总数。 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
5 | 培养基的配制与灭菌 | 1. 培养基的配制、分装方法；2. 实验室灭菌方法及技术。 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
6 | 微生物的平板菌落计数 | 1. 平板菌落计数的原理和方法 2. 平板菌落计数的基本技术 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
7 | 微生物的生理生化反应 | 1. 细菌鉴定中常用的生理生化实验反应原理 2. 细菌鉴定中对糖的生理生化反应过程和原理 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 选做 |
8 | 产淀粉酶的枯草芽孢杆菌的分离 | 1.枯草芽孢杆菌的分离技术。 2.高产淀粉酶菌株的分离方法。 | 3 | 20 | 2 | 综合型 | 必做 |
9 | 检测几种常见消毒剂的杀菌效果 | 1.消毒剂杀菌效果的实验方法 2.评价常见消毒剂的杀菌效果 | 3 | 20 | 2 | 设计型 | 选做 |
10 | 抗链霉素突变菌株筛选 | 学习和掌握抗药性突变株的分离。 | 3 | 20 | 2 | 综合型 | 选做 |
11 | 牛乳在自然发酵与酸败过程中细菌的生态学演变 | 1. 通过生牛乳的自然发酵了解牛乳酸败过程中细菌的生态学演变过程。 2.了解酸牛乳的制作原理。 | 3 | 20 | 2 | 设计型 | 选做 |
12 | 食用菌的纯种分离和培养技术 | 1.学习食用菌的纯种分离和培养技2.掌握食用菌的组织分离技术。 | 5 | 20 | 2 | 设计型 | 选做 |
13 | 乳酸菌筛选及抑菌作用研究 | 1.乳酸菌分离纯化方法 2.乳酸菌的抑菌效果 | 4 | 20 | 2 | 设计型 | 选做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
酒精灯 30套
接种针 30套
超净台 3台
培养箱 3台
显微镜 20台
电子天平 3台
高压灭菌锅 3台
恒温水浴锅 3台
冰箱 1台
离心机 2台
分光光度计 2台
水浴/空气恒温摇床2台
四、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2.将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
五、参考资料
杨格主编《微生物学实验》第二版 高等教育出版社。
周德庆主编《微生物学实验》第二版 高等教育出版社。
课程代码：z1201008 课程性质：专业主干课
课程名称：遗传学英文名称：Genetics
适用专业：生物科学、生物技术开设学期：第3学期
实验学时/总学时：24/64 实验学分/总学分：1.5/4
大纲拟定人：李金莲大纲审定人：杨广成、于伟丽
审定日期：2012-8-25
一、课程实验内容简介
遗传学实验是遗传学教学中不可缺少的一个重要环节，为了配合《遗传学》的理论教学而开设，其发展奠定和巩固了遗传学的核心与前沿学科地位。
本实验课程内容涵盖经典遗传学、细胞遗传学、微生物遗传学及分子遗传学等领域，主要从个体、细胞、分子三个水平揭示遗传学的基本现象与规律，包括验证性实验、综合性实验及设计性实验。
1、实验目的：
（1）通过本课程的系统学习，巩固和加深学生对遗传学知识的理解、验证遗传学基本理论。
（2）让学生初步掌握现代遗传学实验操作技能。
（3）熟悉遗传学实验的基本实验方法，培养学生的基本实验思想。
（4）提高学生实验操作技能和初步独立进行科学研究的能力。
2、实验方式：演示、仪器操作及分析测试。
（1）了解实验的原理，完成每一实验的操作过程；
（2）掌握开设实验的操作方法与技能；
（3）观察实验现象衍变、记录数据、分析结果及其影响因素，得出相应结论；
（4）综合性实验提交具备综合分析与应用能力的实验报告；
（5）对于设计性试验，自查资料、自行设计实验方案，教师审查通过后由学生独立完成实验，并提交具有一定见解的实验报告。
二、实验项目
项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验属性 | 开出 要求 |
1 | 细胞有丝分裂及染色体行为的观察 | 以洋葱根尖为实验材料，制作细胞有丝分裂的薄片并观察。 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
2 | 植物多倍体的诱发和鉴定 | 秋水仙素处理根尖使其诱发成多倍体，制片并观察。 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 选做 |
3 | 果蝇的雌雄鉴别及果蝇唾液腺染色体的观察 | 1、鉴别成虫果蝇的性别。 2、剥离果蝇三龄幼虫的唾液腺，并制备染色体薄片，观察。 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
4 | 概率和统计学原理在遗传学研究中的应用 | 自己设计方案验证分离定律和自由组合定律。 | 2 |
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| 设计型 | 选做 |
5 | 人类X染色质的观察 | 获取毛囊细胞，制备单细胞片子观察人类的Barr氏小体。 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 选做 |
6 | 哺乳动物基因组DNA的提取及琼脂糖凝胶电泳检测DNA | 通过抽提法提取某一动物的基因组DNA并凝胶电泳检测。 | 6 | 3 | 12 | 综合型 | 必做 |
7 | PCR扩增获取某一动物的微卫星位点目的基因 | 选用合适的引物进行PCR扩增，并作琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物。 | 6 | 2 | 25 | 综合型 | 必做 |
8 | 通过微卫星标记检测哺乳动物群体的遗传多样性 | 选定几个微卫星座位检测某一动物群体的遗传多样性。 | 6 | 3 | 12 | 综合型 | 选做 |
9 | RFLP技术检测群体的多态性 | 扩增某一基因片段并进行检测限制性片段长度多态性。 | 6 | 4 | 6 | 综合型 | 选做 |
10 | 人类性状的遗传分析 | 选定一些人类的性状统计分析，探讨人类的群体多样性。 | 2 |
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| 设计型 | 必做 |
11 | 人类ABO血型的调查和分析 | 了解数量遗传学研究中基本数据的统计方法，掌握ABO血型的调查分析。 | 2 |
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| 设计型 | 选做 |
12 | 人类指纹的分析 | 掌握人类指纹分析的方法，学习数量遗传研究中相关数据的统计处理。 | 2 |
|
| 设计型 | 选做 |
13 | PCR法鉴定哺乳动物的性别 | 掌握鉴定哺乳动物性别的基本方法。 | 3 | 1 | 20 | 设计型 | 选做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
1、显微镜 20台
2、高速冷冻离心机 1台
3、PCR仪 1台
4、电泳设备 3套
5、水浴锅 2台
四、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2.将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
五、参考资料
1、《遗传学实验教程》（第二版），郭善利，刘林德主编，科学出版社，2010.3
2、《遗传学实验》，杨大翔编著，北京:科学出版社，2004.9
3、《普通遗传学实验指导》，张贵友等编著, 北京:清华大学出版社，2003.1
4、《分子克隆实验指南》（上、下册）第3版 Sambrook, J. and Russell, D.W. 科学出版社，2002
5、《分子生物学指导》, 魏群主编 ,北京:高等教育出版社，1999.12
课程代码：z1201007 课程性质：专业主干课
课程名称：细胞生物学英文名称：Cell Biology
适用专业：生物科学、生物技术开设学期：第4学期
实验学时/总学时：24/64 实验学分/总学分：1.5/4
大纲拟定人：肖军大纲审定人：杨广成、林科
审定日期：2012-8-25
一、课程实验内容简介
细胞生物学是生物科学专业的一门重要的必修专业主干课程，在生命学科的本科教学中有着十分重要的地位，该课程实验为细胞生物学理论教学提供重要支持。实验课程涉及特殊显微镜的使用、细胞形态结构的观察、细胞化学、细胞生理、细胞融合等内容，是为了强化实验教学效果，提高学生的实验动手能力而设置的一门重要的的生物实验课程。
二、实验目的、实验方式及学生应掌握的实验技术及基本技能
通过细胞生物学实验课不仅加深对理论知识的理解和认证，而且通过对细胞生命现象的观察和亲手操作，使学生获得有关细胞生命活动的感性知识，有效地提高理论课的教学效果，并培养学生树立独立设计实验的思考观念和独立处理问题、解决问题的能力，为以后从事生物学相关的科研和教学工作奠定坚实的研究基础。
1、熟悉并掌握细胞活体染色的方法及意义，了解光学显微镜下线粒体及液泡系的基本形态和结构, 掌握临时装片和细胞记数的技术和显微镜的使用方法。
2、掌握原位显示细胞内化学成分方法。熟悉细胞内DNA、多糖的分布。
3、掌握微丝的结构及染色方法，了解光学显微镜下的微丝的形态。
4、掌握细胞组分分级分离的原理和方法。熟悉匀浆器和冷冻离心机的使用。掌握细胞核与线粒体的分级分离方法。
5、熟悉并理解细胞吞噬、细胞膜选择通透性等基本生理活动。
6、初步掌握聚乙二醇(PEG)诱导细胞融合原理及技术。熟悉荧光显微镜的使用。
7、初步了解细胞培养的技术原理、方法。熟悉超净工作台、二氧化碳培养箱、倒置显微镜的使用。
本实验课以技能训练为主。要求学生实验课前认真预习实验指导书，理解实验原理及实验方案，在实验过程中认真操作，作好实验记录，实验结束后详细整理、分析实验结果，写出规范的实验报告。指导教师概述实验原理和方法及仪器使用等，并作针对性指导，具体实验步骤由学生自行完成。
二、实验项目
序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验属性 | 开出 要求 |
1 | 动植物细胞基本形态结构观察及活体染色 | 细胞的基本形态观察； 人血涂片、人口腔上皮细胞的制备与观察； 植物细胞液泡、线粒体的活体染色与观察； 显微测微尺的使用。 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
2 | DNA的Feulgen染色法和PAS反应法显示多糖 | 临时装片与徒手切片操作； 观察洋葱内表皮细胞Feulgen染色后DNA的形态、分布； 通过PAS反应显示土豆细胞中的多糖。 | 4 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
3 | 细胞核与线粒体的分级分离及观察 | 组织匀浆的方法； 离心机的使用； 细胞器的分离原理 差速离心与密度梯度离心 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
4 | 细胞凝聚反应、红细胞膜通透性的观察及死活细胞鉴别 | 土豆凝集素制备与细胞凝集原理。 研究不同因素对血红细胞膜通透性的影响；
| 5 | 20 | 2 | 设计型 | 必做 |
5 | 植物细胞骨架的光学显微镜观察及细胞显微测量 | 掌握考马斯亮蓝R250染细胞胞质微丝的操作方法。 | 4 | 20 | 2 | 验证型 | 必做 |
6 | 植物原生质体的分离与融合 | 血细胞计数板的使用； 利用PEG（聚乙二醇）、电场诱导细胞融合； 计算细胞融合率。 | 5 | 25 | 2 | 综合型 | 必做 |
7 | 细胞计数及活力测定 | 掌握细胞计数的方法。 了解区分细胞存活状态的方法 | 3 | 25 | 2 | 验证型 | 必做 |
8 | 小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬活动 | 通过观察小鼠巨噬细胞吞噬红细胞的实验，了解巨噬细胞对异物吞噬的原理和功能。 了解吞噬在机体非特异免疫中的重要作用 | 3 | 20 | 2 | 验证型 | 选做 |
9 | 动物细胞原代培养 | 了解原代细胞培养的基本方法和操作过程。 熟悉原代培养细胞观察方法。 | 5 | 20 | 2 | 综合型 | 选做 |
四、实验所需重要仪器设备及台（套）数
双目显微镜（25台）、显微镜测微尺（25套）、细胞计数板（25套）、电热恒温培养箱（1台）、电子天平（2台）、高速冷冻离心机（2台）、低速离心机（2台）、水平离心机（2台）、电动玻璃匀浆机（4台）、微量移液器（5套）、恒温磁力搅拌器（2台）、解剖器（25套）、冰箱（1台）、酸度计（2个）、荧光显微镜（1台）、电子天平、电融合仪（2台）、高压灭菌锅（2台）、细菌过滤器（10套）、紫外可见分光光度计（2台）、CO2培养箱（2台）、倒置显微镜（1台）、超净工作台（1台）、恒温水浴箱（2台）、液氮罐（1个）。
五、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2．将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
六、参考资料
1．实验教材：
《细胞生物学实验教程》，安利国邢维贤主编，高等教育出版社，2010，第2版
2．参考书：
《细胞生物学实验》，翟中和，王喜忠，丁明孝.北京，高等教育出版社, 2000
《细胞生物学实验教程》，王金发, 何炎明主编．北京：科学出版社，2004
《细胞生物学实验指导》，李素文主编．高等教育出版社，施普林格出版社，2001
《细胞生物学实验》，杨汉民主编．高等教育出版社，2002，第2版
课程代码：z1206003 课程性质：专业主干课
课程名称：基因工程英文名称：Gene Engineering
适用专业：生物技术开设学期：第4学期
实验学时/总学时：16/48 实验学分/总学分：1/3
大纲拟定人：李金莲大纲审定人：杨广成、于伟丽
审定日期：2012.8.30
一、课程实验内容简介
基因工程实验是基因工程教学中不可缺少的一个重要环节，为了配合《基因工程》的理论教学而开设。本实验课程主要围绕基因克隆的主线开展，内容主要包括获取目的基因、连接、转化、重组子筛选和鉴定等几个部分，分为基础性实验和综合性实验两种。
1、实验目的：通过本课程的系统学习，目的是使本科生基本上熟悉和掌握现代生物学技术，尤其是基因操作的基本技术。
（1）通过本课程的系统学习，巩固和加深学生对基因工程理论知识的理解。
（2）让本科生基本上熟悉和掌握现代生物学技术，尤其是基因操作的基本技术。
（3）提高学生实验操作技能和初步独立进行科学研究的能力。
2、实验方式：演示及仪器操作。
（1）了解实验的原理，完成每一实验的操作过程；
（2）掌握开设实验的操作方法与技能；
（3）观察实验现象衍变、记录数据、分析结果及其影响因素，得出相应结论；
（4）综合性实验提交具备综合分析与应用能力的实验报告；
（5）对于设计性试验，自查资料、自行设计实验方案，教师审查通过后由学生独立完成实验，并提交具有一定见解的实验报告。
二、实验项目
项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验属性 | 开出 要求 |
1 | PCR扩增制备目的基因 | DNA提取→电泳检测→PCR扩增→电泳检测 | 6 | 2 | 12 | 验证型 | 选做 |
2 | 从琼脂糖凝胶中回收DNA片段 | 通过胶回收试剂盒操作回收目的片段→电泳检测 | 6 | 2 | 12 | 验证型 | 选做 |
3 | 感受态细胞的制备 | 通过CaCl2将大肠杆菌DH5α制备成感受态细胞 | 3 | 2 | 12 | 验证型 | 选做 |
4 | 目的基因片段与载体连接 | 1、目的基因片段与克隆载体连接→重组克隆载体 2、目的基因片段与克隆载体连接→重组表达载体 | 3 | 2 | 12 | 验证型 | 必做 |
5 | 细菌转化 | 将重组载体转化到合适的受体菌体内 | 3 | 2 | 12 | 验证型 | 必做 |
6 | 转化克隆的筛选和鉴定 | 重组质粒的提取→电泳检测 | 6 | 2 | 12 | 验证型 | 必做 |
7 | 外源基因的诱导表达 | 通过IPTG诱导表达目的基因 | 6 | 2 | 12 | 验证型 | 选做 |
8 | SDS-PAGE检测表达蛋白 | 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测表达产物 | 6 | 3 | 12 | 验证型 | 选做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
1、超净工作台：1台
2、高速冷冻离心机：1台
3、PCR仪：1台
4、电泳设备：3套
5、水浴锅：2台
四、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2.将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
五、参考资料
1、《基因工程实验指导》，朱旭芬主编,高等教育出版社，2006.1
2、《分子克隆实验指南》（上、下册）第3版 Sambrook, J. and Russell, D.W. 科学出版社，2002
3、《分子生物学指导》, 魏群主编 ,高等教育出版社，1999.12
4、《分子生物学指导》, 魏群主编 ,高等教育出版社，1999.12
5、《基因工程原理与实验指导》，刘亮伟，陈红歌主编，中国轻工业出版社，2010.9
6、《基因工程实验技术》，陈宏主编，中国农业出版社，2005.8
课程代码：z1201012 课程性质：专业主干课
课程名称：分子生物学英文名称：Molecular biology
适用专业：生物技术开设学期：第4学期
实验学时/总学时：24/64 实验学分/总学分：1.5/4
大纲拟定人：杨红花，林科大纲审定人：杨广成、林科
审定日期：2012-8-20
一、课程实验内容简介
分子生物学是一门近年来发展迅速并且在生命科学领域里应用越来越广泛、影响越来越深远的一个学科，是生命科学学科体系中重要的专业课。通过本课程的实验教学和实验操作，并结合多媒体实验教学，要求学生熟练掌握下列分子生物学实验技术：大肠杆菌感受态细胞的制备和转化，质粒DNA分离及纯化，琼脂糖凝胶电泳，PCR扩增、植物总RNA的提取及鉴定以及SDS-PAGE电泳检测蛋白质的方法和技术等。将利用多媒体教学手段讲解实验的基本原理、方法及有关仪器的使用方法。
二、实验项目
项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验属性 | 开出 要求 |
1 | 大肠杆菌基因DNA的提取及鉴定 | 溶菌酶和SDS法裂解细菌细胞壁 酚/氯仿抽提细菌的基因组DNA 有机溶剂沉淀基因组DNA 琼脂糖凝胶电泳检测DNA的含量和完整性 | 5 | 15 | 2 | 综合型 | 选做 |
2 | 大肠杆菌感受态细胞的制备及质粒DNA的转化 | 感受态细胞的制备 质粒转化感受态细胞 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
3 | 质粒DNA的碱法提取及鉴定 | 质粒的小量碱法提取及电泳检测的流程 | 5 | 15 | 2 | 综合型 | 必做 |
4 | PCR扩增特异DNA片段 | PCR各组分的混样技术及特异扩增引物的设计要求，扩增的影响因素的筛选及扩增产物的电泳检测分析 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 选做 |
5 | 植物总RNA的提取及鉴定 | 掌握Trizol法提取总RNA的方法 变性凝胶电泳检测RNA的技术 | 5 | 15 | 2 | 综合型 | 必做 |
6 | SDS－PAGE检测蛋白质 | SDS-PAGE凝胶的配制技术 蛋白质电泳的操作流程 | 3 | 6 | 4 | 综合型 | 选做 |
7 | 利用RAPD鉴定近缘植物的亲缘关系 | 自行选择不同的近缘植物，通过筛选不同随机引物设计RAPD扩增，对扩增结果进行统计分析，探讨其亲缘关系 | 4 | 15 | 2 | 设计型 | 必做 |
8 | RT—PCR（反转录一聚合酶链反应） | 掌握RT-PCR的原理及引物设计要求 掌握RT-PCR扩增的因素筛选 | 5 | 15 | 2 | 综合型 | 选做 |
9 | Southern杂交 | 掌握Southern杂交的流程和操作技术 | 5 | 15 | 2 | 综合型 | 选做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
紫外可见分光光度计(2)、高速离心机(2)、高速冷冻离心机(2)、冰箱(2)、超低温冰箱(1)、超净工作台(1)、电子天平(2)、恒温摇床(1)、紫外分析仪(1)、PCR仪(2)、电泳仪(2)、恒温水浴锅(2)、微波炉(1)、光照培养箱(2)、微量取液器(15)、玻璃气流烘干器(1)、高压灭菌锅（2）
四、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2.将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
五、参考资料
使用教材：《分子生物学实验》，魏群主编，第二版，高等教育出版社
参考教材：《分子生物学实验指导》，刘进元主编，第2版，高等教育出版社
课程代码：z1206005 课程性质：专业主干课
课程名称：细胞工程英文名称：Cell Engineering
适用专业：生物技术开设学期：第5学期
实验学时/总学时：16/48 实验学分/总学分：1/3
大纲拟定人：张翠大纲审定人：杨广成、于伟丽
审定日期：2012-8-25
一、课程实验内容简介
1.实验目的：
通过细胞工程课程实验课的学习和操作了解生物组织、器官及其细胞离体培养的基本技术，重点掌握细胞培养和细胞融合技术，为从事生物学和生物工程领域的相关科研、教学及生产工作奠定良好技术基础。并在将来的工作中会应用及创新。培养严谨的作风和合作精神。要求学生有强烈的事业心，热爱生物技术专业，理论和实践相结合，更深入的理解和掌握细胞工程原理与技术。
2.实验方式：
细胞工程是生物技术的重要组成部分，同时也是生物学研究的重要技术工具。通过实验教学，使学生重点掌握细胞工程的基本操作技术:无菌操作、培养基制备、动物原代及传代细胞培养、细胞融合及单克隆抗体制备等技术；了解细胞大批量培养方法、植物细胞培养、转基因技术、细胞重组与克隆技术、动物克隆等知识。通过实验课的教学最终达到掌握基本实验技能并培养学生创新能力的目的。
二、实验项目
项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验 属性 | 开出 要求 |
1 | 基础实验技术-器械的清洗与消毒 | 1. 不同用具的清洗 2. 不同用具的消毒 | 2 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
2 | 细胞培养液的制备 | 1. 培养基的配制 2. 消化液、缓冲液、酶液、染色液等的配制 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
3 | 原代细胞培养技术 | 1.酶消化法 2.组织块分离法 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
4 | 培养细胞的增殖观察及活力测定 | 1. 细胞培养的观察和计数方法 2. 绘制生长曲线。 | 2 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
5 | 细胞的传代培养 | 1. 酶消化法传代； 2. 无菌操作技术。 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
6 | 细胞的冻存及复苏 | 1. 细胞冻存的方法 2. 贮存细胞的复苏 | 3 | 15 | 2 | 验证型 | 必做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
酒精灯 30个
移液枪 30套
超净台 3台
CO2培养箱 1台
倒置荧光显微镜 1台
相差显微镜 1台
电子天平 3台
高压灭菌锅 3台
恒温水浴锅 3台
冰箱 1台
离心机 2台
酶标仪 1台
超低温冰箱 1台
液氮罐 1个
四、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2.将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
五、参考资料
安利国主编.细胞工程.科学出版社.2010年第二版.
李志勇主编.细胞工程.科学出版社.2005年第一版.
张卓然主编.实用细胞培养技术.人民卫生出版社.2001年第一版.
鄂征主编.组织培养和分子细胞学技术.北京出版社.1999年第一版.
课程代码：z1206006 课程性质：专业主干课
课程名称：发酵工程英文名称：Fermentation Engineering
适用专业：生物技术开设学期：第6学期
实验学时/总学时：24/80 实验学分/总学分：1.5/5
大纲拟定人：彭静静大纲审定人：杨广成、高洁
审定日期：2012-8-25
一、课程实验内容简介
1.实验目的：《发酵工程》是整个生物技术的核心，是工业微生物实现实验室与工厂化生产的具体操作，是生物技术在生产实践中应用的原理及方法的一部分，是基因工程及酶工程等生物技术工业化的过程与方法。本实验的教学目的是通过该课程的学习加深对理论课程的理解，培养学生学习兴趣，提高综合素质。实验课的目的在于加深对发酵工程基础理论、基本知识的理解，掌握较为通用的实验设计和操作技能，实验内容应以培养学生动手操作能力、提高分析能力和解决实际问题的能力为目的，在实验安排上以研究性和综合性内容为主，贴近实际生产，注重先进性。
2.实验方式：提高学生分析问题和解决问题的能力，培养学生操作技能、实验技巧、科研能力，训练学生创新能力、研发能力等综合专业素质。实验时要严格按照规范操作进行，仔细观察实验现象，并及时记录。要善于思考，学会运用所学理论知识解释实验现象，研究实验中的问题。
二、实验项目
项目序号 | 实验项目名称 | 内容提要 | 实验 学时 | 仪器 套数 | 每套 人数 | 实验属性 | 开出 要求 |
1 | 各种培养基的配制 | 掌握细菌、酵母菌、霉菌的培养基的配方及其制备方法。 | 4 | 5 | 4 | 综合型 | 必做 |
2 | 细菌生长曲线的测定 | 1.了解细菌生长曲线特点及测定原理； 2. 学习用比浊法测定细菌的生长曲线。 | 6 | 5 | 4 | 综合型 | 必做 |
3 | 酸奶的酿制及乳酸菌分离 | 1.学习并掌握酸奶制作的基本原理和方法； 2．学习并掌握从酸奶中分离和纯化乳酸菌的方法。 | 6 | 5 | 4 | 综合型 | 必做 |
4 | 酒类的发酵 | 录像观摩白酒，啤酒，葡萄酒的酿造全过程。 | 4 | 5 | 4 | 综合型 | 必做 |
5 | 细胞固定化 | 1.学习固定化细胞技术的方法; 2.学习酵母发酵产生啤酒的过程。 | 4 | 5 | 4 | 综合型 | 必做 |
三、实验所需主要仪器设备及台（套）数
酒精灯：24套；接种针：4套；超净工作台：3台；生化培养箱：3台；显微镜：5台；电子天平：3台；高压灭菌锅：3台；冰箱：1台；离心机：2台；分光光度计：2台；水浴/空气恒温摇床：2台。
四、实验成绩评定方法
1．教师根据每个学生实验预习情况、实验完成情况、实验报告等方面进行综合评分，并将成绩记录在册。
实验操作：50%
实验报告（含实验结果）：50%
2.将实验成绩以占课程总成绩20%的比例纳入课程的总成绩。
五、参考资料
《生物工程专业实验》第二版，贾士儒主编，中国轻工业出版社。
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